Кровь на гемокультуру алгоритм

Объективное обследование больного

Кровь на гемокультуру алгоритм

Анамнез.

Для установления правильного диагноза большое значение имеет правильно собранный анамнез, т. е. расспрос пациента, причем активный и подробный расспрос, что позволяет выяснить время и последовательность появления ос­новных симптомов болезни, колебания температуры в течение суток, какие медикаментозные средства принимал больной и как они повлияли на течение болезни.

Особое внимание уделяется сбору эпидемиологического анамнезаэто све­дения об условиях жизни больного. Цель сбора этих данных – выяснение по­тенциального или возможного источника заболевания, механизм и пути за­ражения.

Обращают внимание на поездки и пребывание пациента в эндемич­ных районах, контакты с больными людьми и животными, парентеральные вмешательства, переливание крови, употребление сырой воды из открытых источников, сырого молока, немытых овощей и фруктов.

У больного остры­ми кишечными инфекциями выясняют подробно какие продукты употреблял он в пищу за последние 1-2 дня до заболевания. Для каждого инфекционного заболевания характерны свои эпидемиологические особенности.

Уточняют профилактические прививки и какими инфекционными заболеваниями болел ранее.

Позволяет выяснить симптомы характерные для определенного инфекцион­ного заболевания.

Изначально обращают внимание на положение больного в постели, так как больной может занимать вынужденное положение при некоторых заболева­ниях (например, лежа на боку с запрокинутой головой при менингите, сидя, опираясь на руки при дифтерии).

Осмотр больного проводят поэтапно, оценивая каждую систему в отдельно­сти:

• кожные покровы;

• видимые слизистые оболочки;

• лимфатические узлы;

• костно-суставная система;

• органы кровообращения;

• органы дыхания;

• органы пищеварения;

• мочеполовая система;

• нервно-психическая сфера и т. д.

Результатом объективного обследования должно стать выявление сииято-мов, имеющих диагностическое значение. Особое внимание уделяется па-тогномоничным симптомам, т.е.

характерным для определенного заболева­ния (например, спазм жевательных мышц – тризм при столбняке, характер­ный карбункул при сибирской язве).

К сожалению эти симптомы появляютс только при некоторых инфекционных заболеваниях, поэтому большое значе­ние имеют так называемые опорные симптомы, под ними подразумевают симптомы характерные для определенных инфекционных болезнях, но и ко­торые встречаются при других заболеваниях (например, менинтеальные сим­птомы при менингококковой инфекции, скудный стул с примесью крови и слизи при дизентерии, гиперемия миндалин, налеты на них при инфекцион­ном мононуклеозе, фибринозные налеты, распространяющиеся за пределы миндалин при дифтерии, нарушение опорно-двигательного аппарата при бруцеллёзе и т. д.).

При диагностике инфекционных заболеваний может помочь вид языка (при брюшном тифе язык утолщен, с отпечатками зубов на боковых поверхностях, покрыт серым налетом, но края и кончик языка свободны от налета). Очень часто при инфекционных болезнях отмечаются диспепсические рас­стройства в виде тошноты, рвоты, жидкого стула.

Обращают внимание на состояние живота (вздутие, урчание, болезненность при пальпации).

При наличие рвоты необходимо произвести осмотр рвотных масс с регистра­цией в истории болезни содержимого, консистенции, объёма, цвета. При наличии поноса – количество, цвет, запах, наличия примеси крови и сли­зи.

Для многих инфекционных болезней характерно увеличение печени и селе­зёнки, поэтому важно не только констатировать их увеличение, но и опреде­лить размеры.

При диагностике некоторых инфекционных заболеваний (вирусные гепати­ты, лептоспироз, ГЛПС) существенное значение имеет цвет мочи, её количе­ство.

Появление менингеальных симптомов при менингококковой инфекции слу­жит показанием для проведения люмбальной пункции.

Нарушение зрения в виде «тумана», «сетки» перед глазами, двоение в глазах является одним из ранних признаков заболевания при ботулизме.

Окончательный диагноз выставляется с учётом методов лабораторного и ин­струментального исследования, которые подтверждают наличие или пребы­вание микроорганизма-возбудителя в организме больного.

К методам прямого обнаружения возбудителя относят:

• бактериоскопический;

• бактериологический.

К косвенным методам относят:

• серологический;

• иммунологический;

аллергологический.

Результативность лабораторных методов исследований зависит от иравиль-ности забора материала на исследование, его хранения и доставки в лабора­торию, поэтому отрицательный результат исследования не может быть пово­дом для исключения предполагаемого диагноза.

Бактериоскопический (микроскопический) методиспользуется для обна­ружения под микроскопом возбудителя в патологическом материале (крови, слизи, ликворе, фекалиях, пунктате бубона и т. д.), взятом от больного. Из полученного материала делается мазок (мазок-отпечаток) с последующим окрашиванием различными красителями.

Преимущество этого метода – бы­строта, результат может быть получен уже через несколько часов. Для повы­шения чувствительности используют специальные сыворотки, содержащие антитела к возбудителю, помеченные специальными красками – флюорохро-мами. Такой метод называется иммунофлюоресцентным и относится к ран­ним методам диагностики.

Техника забора материала и приготовление мазков со слизистых оболочек ротовой полости, зева, небных миндалин и носа.

Мазок из зева берется натощак или не ранее чем через 2 часа после приема пищи, питья, полоскания горла или других процедур.

Для забора используют предварительно простерилизованные в лаборатории сухие или слегка увлаж­ненные физиологическим раствором ватные или марлевые тампоны, намо­танные на деревянную палочку или проволоку из нержавеющего материала и помещенные в пробирку.

Придавливая корень языка шпателем, тампон осто­рожно вводят в ротовую полость, не касаясь языка, зубов и слизистых оболо­чек рта, собирают интересующий материал (гной, слизь) лучше на границе пораженного участка, там, где микробов больше, нанося на предметное стек­ло, обводят стеклографом, маркируют, высушивают и направляют в лабора­торию.

Перед взятием слизи из носа больному необходимо очистить носовые ходы либо путем высмаркивания, либо сухими ватными фитилями. Тампон, вве­денный в нос, должен плотно прикасаться к стенкам носовых ходов.

Полу­ченный материал сразу же засевается на плотные питательные среды и нано­сится на предметное стекло, обводится стеклографом, подсушивается, мар­кируется и направляется в лабораторию на микроскопическое исследование.

Для приготовления мазков-отпечатков слизистой носа используют специаль­ные пластинки из стекла или плексигласа длиной 70-80 мм, шириной 5-6 мм и толщиной 2-2,5 мм с закругленными и хорошо отшлифованными краями.

После очищения носа, пластинки вводят в носовой ход на глубину не более 2-3 см и слегка прижимают к носовой перегородке, выводят осторожно, что­бы не смазать отпечаток. Границы обводят стеклографом, подсушивают, маркируют и направляют в лабораторию для исследования.

Смывы из носоглотки необходимо проводить в первые дни болезни, когда концентрация микробов большая, и они интенсивно выделяются в окружаю­щую среду. Для сбора смыва больной должен трижды прополоскать горло физиологическим раствором, используя каждый раз 10-15 мл жидкости. Смывы собирают в стерильную банку, после полоскания горла заднюю стен­ку глотки больного протирают стерильным тампоном, который помещают также в банку со смывами. Банку плотно закрывают крышкой и направляют в лабораторию для проведения вирусологических, иммунофлюоресцентных исследований.

Техника приготовления тонкого мазка крови и препарата «толстая капля». Эти препараты необходимы для диагностики возвратного тифа и малярии. Кровь берется во время лихорадки (сразу после озноба) из четвертого пальца левой руки (можно из мочки уха), предварительно обработав 70% спиртом.

Первую каплю крови стирают сухой ватой и только вторую каплю наносят (не касаясь пальцем стекла!) на обезжиренное предметное стекло и другим стеклом со шлифованным краем делают мазок. Мазок должен быть ровным и тонким.

После просушивания мазок маркируется простым карандашом (ука­зывается фамилия больного, номер анализа по списку, указывается дата). Для приготовления препарата «толстая капля» каплю не размазывают на предметном стекле, а углом другого стекла круговыми движениями доводят до 10-15 мм в диаметре.

Толщина полученной капли должна быть такой, что­бы через неё был виден газетный шрифт. Обычно на одном стекле делают 2-3 «толстые капли». Препарат высушивают при комнатной температуре не ме­нее 2-3 часов и окрашивают по методу Романовского – Гимзы в течение 30-45 минут.

Окрашенный препарат ополаскивают несильной струей водопро­водной воды и просушивают в вертикальном положении. Фиксируют мазок 96% этиловым спиртом в течение 10 минут. На обратной стороне стекла стеклографом пишут фамилию больного и его регистрационный номер.

Бактериологический методзаключается в выделении чистой культуры воз­будителя путем посева на искусственные питательные среды. Материалом может служить кровь, спинномозговая жидкость, кал, моча, рвотные массы и др.

Материал желательно брать до начала противомикробного лечения.

В стационаре материал для первого бактериологического исследования берут

у пациентов в приемном покое.

Недостатком этого метода является длительность исследования, так как мик­робы растут медленно и результат может быть получен только через 2-4 дня и даже позже. Для выделения каждого микроба требуется соответствующая питательная среда.

Для проведения бактериологического исследования требуется максимально быстрая доставка материала в лабораторию (например, посев крови осущест­вляется только у постели больного).

Если быстрая доставка невозможна ис­пользуют консервирующие смеси, при отсутствии таких смесей материал должен хранится в холодильнике при температуре +4*С или на льду.

Для сбора материала используется только стерильная посуда, не содержащая даже следов дезинфицирующих средств.

Посев крови (гемокультура).

Это наиболее ранний и достоверный способ лабораторной диагностики Его делают в любой день болезни, когда у больного повышена температура, но чем раньше от начала заболевания производится посев, тем больше шан­сов получить положительный результат.

Для повышения положительных результатов при отсутствии противопоказа­ний за 15-20 минут до взятия крови рекомендуется ввести подкожно 1 мл 0,1% раствора адреналина, что способствует сокращению селезенки и выходу в кровяное русло возбудителя.

Забор крови и посев проводится с соблюдением правил асептики и антисеп­тики у постели больного.

Забор и посев крови осуществляется как правило двумя медработниками, один проводит забор крови, другой осуществляет посев крови.

Стерильным шприцем из локтевой вены на первой недели болезни берут не менее 10 мл крови у взрослых и 5 мл у детей, а в более поздние сроки болез­ни – 15-20 мл либо у постели больного, либо в процедурном кабинете.

Место инъекции обрабатывают 70% этиловым спиртом, затем 5% настойкой йода и снова спиртом. Извлеченную из вены иглу снимают не руками, а про­калённым пинцетом.

Если кровь забирают поздно вечером или ночью, то её хранят в холодильни­ке при температуре 2-4*С до утра, но не более суток.

Ставят в термостат при t +37 *С, через сутки делают посев на плотную пита­тельную среду, в отношении 1:10 (при меньшем объёме питательной среды кровь может оказать бактерицидное действие на возбудителя).

Посев проводят во флакон, горлышко которого обжигается над пламенем спиртовки перед выпусканием крови в среду и при закрывании флакона пробкой.

Через 2 суток лаборатория даёт предварительный результат, через 4-10 дней

– окончательный;

Алгоритм взятия крови из вены на гемокультуру.

Приготовить: стерильный лоток, шприц 10-20 мл, иглу для венепункции, пинцет, стерильные ватные шарики, лоток для сброса отработанного шприца и иглы, спирт 70*, спиртовку, спички, жгут, подушечку под локтевой сустав, флакон со средой Раппопорт.

1. Надеть маску, резиновые перчатки, собрать шприц.

2. Надеть иглу для в/в инъекции, проверить её проходимость.

3. Зажечь спиртовку.

4. Наложить венозный жгут на плечо.

5. Исследовать вену.

6. Обработать место прокола спиртом 2-кратно.

7. Зафиксировать вену большим пальцем левой руки.

8. Проколоть кожу. Войти в вену.

9. Набрать 10 мл крови, оттягивая поршень шприца на себя.

10. Снять жгут.

Источник: https://studopedia.su/10_1558_ob-ektivnoe-obsledovanie-bolnogo.html

Микробиологический анализ крови

Кровь на гемокультуру алгоритм

Медицина / Диагностика / Диагностика (статья)

Анализ кровиБактериологический посев крови назначают для подтверждения или исключения наличия в крови микроорганизмов: бактерий (бактериемия) или грибов (фунгемия). Этот анализ показан в следующих клинических случаях:

  • Подозрение на сепсис (системная воспалительная реакция, вызванная инфекцией).
  • Диагностика заболеваний, при которых характерно распространение инфекции с кровотоком (например, остеомиелит – инфекционное поражение костной ткани, костного мозга и окружающих тканях; инфекционный артрит – инфекционное поражение тканей суставов; эндокардит – инфекционное поражение внутренней оболочки сердца и т.д.). То есть, при положительном результате анализа на бактериологический посев крови есть основание ставить диагноз этих состояний.
  • Лихорадка (повышение температуры тела и озноб) неясного генеза (когда в течение 10 дней и более наблюдается повышение температуры тела без видимой причины). Обследование таких пациентов обычно подразумевает бактериологический посев крови с целью обнаружения возбудителя.

ПРИНЦИПЫ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО АНАЛИЗА КРОВИ

Основная задача микробиологического анализа крови – исследовать биологический материал на наличие микроорганизмов (бактерий или грибов).

Определить наличие бактерий в образце крови (подтвердить или исключить) путем только микроскопического исследования невозможно, поскольку в ней содержится недостаточное количество микробов.

Чтобы выявить наличие микроорганизмов, их нужно размножить в жидкой питательной (культуральной) среде, в которой содержаться все необходимые компоненты для успешного роста.

При добавлении в культуральную среду образца крови, контейнер инкубируется при оптимальной для роста микроорганизмов (+37°C) до момента, когда культура микробов не становится заметной.

Сроки инкубации образца занимают, как правило, от 6-18 часов до нескольких дней и даже недель (если определяются микроорганизмы с медленным ростом). Практический лабораторный опыт показывает, что если в течение 3-х дней инкубации не наблюдается очевидный рост бактерий, то вероятность наличия инфекции в культуре (то есть образце крови, который был помещен в культуральную среду) очень низкая. Несмотря на это, за культурой продолжают наблюдение, поскольку в ней могут обнаруживаться медленно растущие виды микроорганизмов.

В случае обнаружения видимого роста микроорганизмов, обогащенная бактериями культура окрашивается, после чего исследуют под микроскопом. Микроскопическое исследование выращенной в образце крови культуры – первый шаг идентификации вида микроорганизмов (палочки, грамотрицательные или грамположительные кокки и т.д.).

Для более точной идентификации выполняют посев жидкой культуры на плотной среде в чашке Петри. В плотной культуральной среде (в чашке Петри) наблюдают рост колоний микроорганизмов, каждая из которых размножается только от одной единственной бактериальной клетки. Затем из одной колонии берут образец, над которым проводят химические исследования.

Именно химические тесты позволяют точно определить вид микроорганизма.

После выделения и идентификации вида микроорганизма, определяют их чувствительность к антибактериальным препаратам. Полученные данные позволяют назначить пациенту максимально эффективную терапию (лечение).

Нужно отметить, что бактериемия и фунгемия – опасные состояния, представляющие угрозу жизни, поэтому требуют срочной терапии антибактериальными препаратами.

При подозрении на эти состояния, учитывая клиническую картину, лечение назначают немедленно, не дожидаясь результатов микробиологического исследования.

При этом, когда известен результат лабораторного анализа (особенно показатели чувствительности к антибиотикам, который, как правило, лаборатории выдают через 3-4 дня), в случае необходимости, антибактериальный препарат может быть заменен на более эффективный.

Забор крови

цель при заборе образца крови – поместить полученный образец в контейнер с культуральной средой, при этом необходимо избегать любое возможное загрязнение (с кожи больного, рук медицинского персонала, из окружающей среды и т.д.).

Время забора крови

Забор образца крови для проведения микробиологического анализа нужно проводить до начала антибиотикотерапии. В противном случае рост микроорганизмов в культуре может быть отсрочен или полностью предотвращен, что приведет к получению ложноотрицательного результата.

Если у пациента перемежающаяся лихорадка (febris intermittis; быстрое, значительное повышение температуры тела, которая держится несколько часов, после чего также быстро опускается до нормальных значений), забор крови необходимо проводить (по мере возможности) в момент повышение температуры тела или сразу же после прохождения пика температурного показателя – в этот период максимально повышается количество микроорганизмов в крови.

Большинство лабораторий рекомендуют проводить второй забор крови не позднее чем через 1 час после первого забора. Таким образом повышаются шансы выявления инфекции, а также появляется возможность отличить истинную бактериемию (при истинной бактериемии микробы обнаруживаются в обоих образцах крови) от бактериального загрязнения.

Контейнеры для культивирования образца крови

Образец крови собирают в специальные стерильные контейнеры с жидкой культуральной средой. Существует несколько видов таких контейнеров, содержащих культуральную среду, которая представляет собой жидкую смесь питательных компонентов, обеспечивающих рост микроорганизмов.

Для забора образца крови на бактериальный посев многие лаборатории предоставляют два вида контейнеров: один контейнер содержит кислород над жидкой средой (кислород необходим для роста аэробных микроорганизмов), другой – смесь газов без кислорода (для культивирования микробов, которые развиваются только в условиях отсутствия кислорода). В этом случае образец крови собирается в оба контейнера.

Необходимый объем крови

При бактериемии в 1 мл крови может содержаться всего лишь одна микробная клетка, поэтому недостаточное количество крови, собранной в контейнер с культуральной средой, может быть причиной получения ложноотрицательного результата анализа.

Тем не менее ложноотрицательный результат можно получить и при внесении в культуральную среду очень большого количества крови. Дело в том, что в культуре кровь продолжает оказывать бактерицидное действие, если она не разведена до достаточной степени в культуральной среде.

Для получения достоверного результата анализа нужно соблюдать необходимые пропорции крови и культуральной среды, чтобы соблюсти эффект разведения. Оптимальным разведение крови в культуральной среде считается пропорция 1:10.

При этом необходимый объем крови (как правило 5-10 мл) зависит непосредственно от самой культуральной среды, которая внесена в контейнер для сбора биологического материала.

Важно, чтобы в каждый контейнер было внесено то количество крови, которое требует бактериологическая лаборатория.

Техника забора крови

При сборе образца крови на микробиологический анализ необходимо строго придерживаться правил асептика, чтобы исключить бактериальное загрязнение культуры. При условии соблюдения правил, в контейнер с культуральной средой попадает только тот микроорганизм, который содержится в крови пациента.

  • Забор образца крови проводят только из периферической вены. При этом нельзя использовать постоянный венозный катетер, так как он может быть загрязнен бактериями.
  • Процедура забора образца крови проводится в стерильных перчатках. Место венепункции необходимо обработать соответствующим дезинфицирующим раствором и подождать, пока он высохнет (венепункция должна проводиться на сухой коже). Также необходимо продезинфицировать поверхность контейнера с культуральной средой (особенно крышку), куда будет помещен образец крови.
  • Венепункция проводится стерильными шприцом и иглой (к месту пункции руками не прикасаться).
  • В контейнер с культуральной средой кровь вносят через закрывающую его резиновую пробку. Резиновую пробку никогда нельзя снимать с контейнера, так как в культуральную среду могут попасть бактерии из окружающей среды.
  • Если у пациента нужно взять кровь для проведения сразу нескольких анализов, в первую очередь нужно заполнить контейнер с культуральной средой. Таким образом предотвращают попадание микроорганизмов с другой лабораторной посуды.
  • Контейнер с культурой крови должен быть промаркирован (на этикетке должны быть внесены точные данные пациента) и вместе с сопроводительной документацией как можно быстрее доставлен в лабораторию. Если немедленная отправка полученного образца невозможна, контейнер нужно поместить в термостат при температуре 37°С (таким образом обеспечив условия для роста микроорганизмов). Отметим, что в сопроводительной документации, которая отправляется в лабораторию, нужно указать основные клинические данные и сведения об антибактериальное терапии, если таковая проводилась (или проводится) до момента взятия образца крови.

Интерпретация результатов анализа

Большинство лабораторий при наблюдении за культурой крови обычно выдают ежедневные промежуточные заключения. Окончательный результат исследования включает точную идентификацию вида микроорганизмов, обнаруженных в культуре, а также данные о чувствительности (или устойчивости) данного вида к антибиотикам.

Результаты бактериологического посева крови делят на следующие группы:

  • Рост микроорганизмов отсутствует
  • Чисты рост
  • Смешанный рост

Отсутствие роста микроорганизмов

Отсутствие роста бактерий в культуральной среде – нормальный результат, который означает, что кровь стерильна.

Тем не менее, перед тем, как интерпретировать такой результат, необходимо убедиться, что он не является ложноотрицательным (то есть, у больного есть бактериемия, которую не удалось подтвердить лабораторно с помощью этого анализа). Основными причинами получения ложноотрицательного результата являются:

  • Недостаточный объем крови, помещенный в культуральную среду
  • До момента забора крови пациент принимал антибиотики
  • Недостаточный инкубационный период для роста редких видом микроорганизмов, которые долго растут

Чистый рост микроорганизмов

Чистый рост микроорганизмов означает, что определяется развитие только одного вида бактерии (Escherichia coli (Кишечная палочка), Staphylococcus aureus (Золотистый стафилококк), Streptococcus pneumonia (Пневмококк) и др), обнаруженного в культуре.

Если у пациента сепсис, чистый рост микроорганизмов – ожидаемый результат. Отметим, что около 10-20% случаев обнаруженная инфекция происходит не з крови пациента, а попадают в культуральную среду из-за нарушений правил асептики при заборе крови на анализ.

Отметим, что возбудителем септицемии может выступать любой вид бактерий, поэтому бывает трудно определить, является ли чистый рост бактерии в культуральной среде результатом бактериального загрязнения (ложноположительный результат) или истинно отражает септицемию (положительный результат).

Предположим, что посев крови позволил выделить, например, Staphylococcus epidermidis (Эпидермальный стафилококк), который в норме присутствует на коже каждого человека. Эта бактерия легко может попасть в культуральную среду с кожи пациента или медицинского персонала в момент забора крови.

И несмотря на то, что Staphylococcus epidermidis действительно является одним из самых распространенных внешних загрязнителей культуры крови (что приводит к ложноположительному результату при посеве крови), этот кокк также выступает в роли одного из самых распространенных возбудителей септицемии у больных при инфицировании венозного катетера. Кроме этого, эпидермальный стафилококк может быть возбудителем эндокардита у пациентов после операций на сердце. То есть, обнаружение этой бактерии при посеве может означать как внешнее загрязнение, так и обладать клиническим значением.

Именно такие микроорганизмы, как эпидермальный стафилококк, входящие в состав нормальной микрофлоры человека, являются наиболее распространенными внешними загрязнителями культуры крови.

Тем не менее, чистый рост любой инфекции в культуре крови скорее всего является признаком септицемии, а не бактериального загрязнения, при условии, что этот же вид микроорганизма был выделен:

  • При повторном заборе образца крови у пациента
  • У пациента из любого другого инфекционного очага

Смешанный рост микроорганизмов

Получение смешанного роста означает, что в культуре крови выделяется более одного вида микроорганизмов.

Истинное инфицирование крови более чем одним видом микроорганизмов происходит очень редко, поэтому такой результат, в большинстве случаев, является подтверждением загрязнения культуральной среды по причине нарушения правил асептики, особенно если выделенные изолированные виды инфекции относятся к обыкновенным контаминантам. Интерпретация такого результата анализа очень затруднительная и требует привлечения специалиста-микробиолога.

Источник: https://medqueen.com/medicina/diagnostika/diagnostika-statya/2030-mikrobiologicheskiy-analiz-krovi.html

Продемонстрируйте забор крови на гемокультуру

Кровь на гемокультуру алгоритм

5.Для посева крови необходимо приготовить:

Оснащение: шприц, стерильный лоток, ватные шарики, 70% спирт, клеенчатая подушечка, жгут, стерильные перчатки, желчный бульон

1.обработайте руки

2.надеваем стерильные перчатки

3.под локоть пациента подкладываем клеенчатую подушечку

4.на среднюю треть плеча накладываем и завязываем жгут на рубашку или салфетку

5.просим пациента нескольок раз сжать кулак, одновременно обрабатываем область локтевого сгиба последовательно 2 ватными шариками, смоченными спиртом

6.проверяем проходимость иглы и отсутствие воздуха в игле

7.берем шприц в правую руку: указательным пальцем фиксируем канюлю иглы, остальные пальцы охватывают цилиндр

8.левой рукой натягивает кожу в области локтевого сгиба, несколько смещая ее к переферии, чтобы фиксировать вены (кулак пациента сжат)

9.не меняя положения шприца в руке, держа игру срезом вверх, почти параллельно коже, прокалываем кожу и пунктируем вену, пока не ощутим попадание в пустулу

10.убеждваемся, что игла в вене, тянем поршень на себя – в шприце появится кровь, набираем необходимый объем крови (5-10 мл)

11.развязываем жгут

12.прижимаем к месту инъекции ватный шарик, смоченный спиртом, извлекаем иглу.

Часть D Составить плане беседы в школе по профилактике ЧМТ.

Задания: Билет № 22

Задача:

К больному С., 42 лет, был вызван фельдшер скорой помощи с жалобами на слабость, головную боль, повышение температуры до 39С, озноб. Болен 5-й день, все дни отмечал слабость, периодические подъемы температуры до 40С. Повышению температуры предшествовал сильный озноб. Падение температуры происходит резко и сопровождается сильной потливостью. Лихорадочные приступы повторяются через 1 день.

При осмотре: состояние средней тяжести, бледен, склеры субиктеричены, сыпи нет. В легких дыхание везикулярное. Пульс 94 уд/мин, тону сердца приглушены, АД 115/75 мм рт.ст. Язык обложен, влажный. Живот мягкий, слегка болезненный в правом и левом подреберьях. Печень увеличена на 2 см., пальпируется селезенка. Менингиальных симптомов нет. Физиологические отправления в норме.

Эпидемиологический анамнез: последние 2 года жил с семьей в Пакистане, возвратился 18 дней тому назад.

1.Сформулируйте и обоснуйте предположительный диагноз.

2.Составьте план обследования больного.

3.Перечислите возможные осложнения и назовите методы их профилактики.

4.Определите дальнейшую тактику фельдшера.

5.Продемонстрируйте технику приготовления мазка и толстой капли крови.

Эталон ответа:

1.Предполагаемый диагноз.-.малярия трехдневная. Поставлен на основании клинических данных: интоксикация, перемежающая лихорадка, протекающая с ознобом, жаром, потливостью, периодичность лихорадочных приступов – через 1 сутки, и два дня апирексии, гепатоспленомегалия. На основании эпидемиологического анамнеза — пребывание в районе, эндемичном малярии.

2.Общий анализ крови – эритроцитопения. ретикулоцитоз, нейтрофильный лейкоцитоз, увеличение СОЭ. Общий анализ мочи – низкая плотность мочи, выраженная протеинурия.

Биохимическое исследование крови – повышение содержания мочевины и креатинина, повышение свободной фракции билирубина, вследствие внутрисосудистого гемолиза, паразитологическое исследование – нахождение в мазке крови и толстой капле крови плазмодия – vivax.

3.Осложнения – малярийная кома – проявляется сильной головной болью, многократной рвотой, беспокойством больного, сменяющимся психической и физической вялостью, потерей сознания, затем возбуждением, появлением патологических рефлексов. В период глубокой комы – полная арефлексия, утрата сознания.комы – полная арефлексия, утрата сознания.

Гемоглобинурийная лихорадка обычно развивается при топической малярии на фоне лечения хинином и связана с острым внутрисосудистым гемолизом.

Развивается внезапно потрясывающий озноб, быстрый подъем температуры, боль в пояснично-крестцовой области, рвота, желтуха. Диурез уменьшается. Моча приобретает темно-коричневый или черный цвет.

Острая почечная недостаточность – развивается в результате нарушения микроциркуляции в почках.

Техника приготовления мазка и толстой капли крови – согласно алгоритму действия.

Часть D Составить план беседы о профилактике туберкулеза для персонала школы.

Задания: Билет № 24

Вы работаете фельдшером скорой помощи. Прохожий останавливает вашу машину, едущую с вызова. На обочине дороги лежит мужчина средних лет.без сознания.

Объективно: неконтактен, речь отсутствует, болевая реакция сохранена. На лице множественные ушибленные рваные раны, в лобной части подкожная гематома. На волосистой части головы, в затылочной области, подкожная гематома без повреждения кожных покровов. Левый зрачок немного шире, чем правый. АД 80/60 мм рт.ст. пульс 64 уд/мин, дыхание поверхностное, учащенное. ЧДД 26 в минуту.

1. Определите неотложное состояние, развившееся у пациента.

2. Составьте алгоритм оказания неотложной помощи и обоснуйте каждый этап.

3. Продемонстрируйте технику

Эталон ответа:

1.Открытая черепно-мозговая травма (ушиб головное мозга).

Основание: данные объективного осмотра: нарушение сознания, ранение головы, нарушение сердечной и дыхательной деятельности (гипония и одышка).

2.Алгоритм оказания неотложной помощи:

-ввести гормоны (преднизолон, дексаметазон) в/в для стимуляции сердечной и дыхательной деятельности и снижения внутричерепного давления; при отсутствии гормонов ввести аналептики (кордиамин и кофеин);

-наложение асептической повязки на область ран с предварительной обработкой 3% раствором перекиси водорода

-убедиться в проходимости верхних дыхательных путей, при необходимости очистить ротовую полость от слизи и зубных протезов и установить воздуховодную трубку

транспортировать на носилках в нейрохирургический стационар.

Часть С Продемонстрируйте технику исследования пульса.

Часть D Составить план беседы в школе о вреде фастуфуда.

Задания. Билет № 25

Задача:

Вы работаете фельдшером здравпункта без врача. К Вам обратился мужчина 49 лет с жалобами на сильные боли в области нижней челюсти слева, боль и подвижность нижних левых жевательных зубов, затрудненное смыкание зубов, затрудненный прием пищи. Возникновение болей связывает с травмой, которую получил на рабочем месте – оступился и ударился о край своего станка.

Объективно: состояние средней тяжести, нарушение конфигурации лица вследствие вынужденного положения нижней челюсти – рот полуоткрыт, слюнотечение и кровотечение изо рта зубные ряды не смыкаются, при пальпации контуров нижней челюсти выражена боль, определяется неровность в области угла нижней челюсти слева, определяется подвижность отломков нижней челюсти.

Часть С Продемонстрируйте технику измерения АД.

Часть D Составить план беседы о профилактике полиомиелита для персонала детского сада.

1.Сформулируйте и обоснуйте предположительный диагноз.

2.Назовите дополнительные методы исследования для уточнения диагноза.

3.Расскажите об объеме доврачебной помощи и правилах транспортировки по назначению.

4.Составьте план диагностических исследований в стационаре.

5.Продемонстрируйте технику измерения АД.

Эталон ответа:

1.У больного перелом нижней челюсти. Заключение основано на данных анамнеза — наличие травмы, выраженный болевой симптом и данных объективного исследования – вынужденное положение нижней челюсти, подвижность отломков челюсти и боль при пальпации, нарушение прикуса, кровотечение и слюнотечение изо рта.

2.Дополнительные симптомы, которые можно выявить при пальпации — подвижность зубов в области перелома.

Для подтверждения диагноза необходимо рентгенологическое обследование, которое поможет определить точную локализация перелома и его характеристику.

По состоянию больной не нуждается в госпитализации, для оказания специализированной помощи он должен быть направлен в стоматологическую поликлинику.

3.Доврачебная помощь:

а)с целью профилактики асфиксии необходимо провести осмотра полости рта на наличие инородных тел (сгустка крови, коронки зубов и др.)

б)с целью обезболивания ввести парентерально препараты спазмолитического и анальгетического действия

в)провести вправление челюсти

г)закрепить отломки челюсти в положении прикуса при помощи круговой повязки

д)направить в стоматологическую поликлинику для оказания специализированной врачебной помощи.

4.Диагностическая и лечебна программа в стоматологической поликлинике:

-рентгеноскопия головы в 2 х проекциях, проведение местной анестезии (05; 1.2% раствор новокаина, 2% раствор лидокаин и др.)

-изготовление и фиксация индивидуальных шин по Тигерштедту с зацепными петлями * рекомендации больному по уходу за полостью рта и питанию

-назначение сроков контрольного посещения.

5.Техника измерения АД – согласно алгоритму.

Часть D Составить план беседы о профилактике полиомиелита для персонала детского сада

БИЛЕТ 26

Задача: Вы пришли на вечеринку к друзьям. Было весело, играла классная музыка, девочки, и мальчики шумно развлекались, каждый по – своему. Спиртные напитки были на любой вкус, с закуской правда была «напряженка». Вам, почему-то было не весело. Выпивать Вы не любитель, да и не все развлечения были Вам по душе.

Вы пошли искать друга Петю, чтобы сказать ему, что идете домой. Нашли вы его в ванной, его непрерывно рвало. Он сказал, что ему очень плохо и попросил не бросать его одного в этой компании. С трудом Вы добрались до Вашего дома.

Утром Петя рассказал, что выпил не очень много, но это было в первый раз, в другой раз он надеется, что легче перенесет употребление спиртных напитков.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Источник: https://studopedia.ru/20_13040_prodemonstriruyte-zabor-krovi-na-gemokulturu.html

Техника взятия и посева крови на гемокультуру и стерильность

Кровь на гемокультуру алгоритм

Цель: определить вид возбуди геля инфекционного заболевания и его чувствительность к антибиотикам.

Оснащение: Шприц для однократного применения, лоток стерильный с тампонами и пинцетом, жгут резиновый, салфетка (подложить под жгут), 70% этиловый спирт, спецодежда (стерильный халат, маска, перчатки), чистые пробирки в штативе.

Дополнительное оснащение: – стерильные флаконы со средами (в 1-ю неделю заболевания получить флакон со 100 мл; во 2-ю неделю 150 мл; 3-я педеля -200мл) полученными в бактериологической лаборатории к моменту забора крови;

– спички, спиртовка.

Этапы Примечание
Подготовка к процедуре
1. Объяснить пациенту цель и ход исследования и получить его согласие. При необходимости дать инструктаж и составить памятку по подготовке пациента к процедуре. Забор крови осуществляется в вечернее время на высоте температурной кривой. Рекомендуется исключить прием жирной пищи накануне исследования.
2. Подготовить оснащение, пронумеровать пробирку и направление. Пробирка и направление каждого пациента имеют одинаковый номер.
3. Помощь пациенту занять удобное положение для венепункции лежа или сидя. Зависит от тяжести состояния пациента.
4. Вымыть и осушить руки, надеть спецодежду, перчатки. Соблюдается безопасность сестры на рабочем месте.
5. Подложить под локоть пациенту клеенчатый валик. Для максимального разгибания локтевого сустава.
6. Наложить резиновый жгут в области средней трети плеча и завязать так, чтобы петля жгута была направлена вниз, а свободные концы вверх (под жгут подложить салфетку или расправить рукав рубашки).
7. Попросить пациента несколько раз сжать и разжать кулак. Найти наиболее наполненную вену. Лучше пунктировать наполненную и фиксированную вену.
8. Обработать вену в области локтевого сгиба ватными шариками или салфетками, смоченными 70% спиртом, не менее двух раз, меняя их, соблюдая правила асептики. Обязательно соблюдать правила асептики.
9. Зажечь спиртовку.
Выполнение процедуры
1. Набрать, необходимое количество крови в шприц, снять иглу, сбросить в дезинфицирующий раствор. Набирается из вены в 1-ю неделю заболевания 10 мл: во 2-ю неделю -1 5 мл; в 3-ю неделю – 20 мл.
2. Открыть стерильную емкость левой рукой, соблюдая стерильность, обжечь горлышко над пламенем спиртовки.
3. Выпустить медленно кровь из шприца, не касаясь стенок емкости. Закрыть емкость, обжигая пробку.
Окончание процедуры
1. Помочь пациенту встать или лечь удобно. Зависит от тяжести состояния пациента.
2. Установить штатив в контейнер, затем в бикс, уплотнив ватой или поролоном.
3. Доставить бикс с кровью и направлением в клиническую лабораторию.

Техника забора крови на серологическое и биохимическое исследование

Цель: лабораторная диагностика инфекционных болезней.

Оснащение: шприц для одноразового применения лоток стерильный с ватными тампонами и пинцетом, жгут резиновый, салфетка (подложить под жгут), 70% этиловый спирт, спецодежда (медицинский халат, маска, перчатки).

Чистые пробирки в штативе.

Этапы Примечание
Подготовка к процедуре.
1. Объяснить пациенту цель и ход исследования и получить его согласие. При необходимости дать инструктаж и составить памятку по подготовке пациента к процедуре. Забор крови из вены проводиться утром, натощак, до приема лекарственных средств. Рекомендуется накануне исследования не принимать жирной пищи.
2. Подготовить оснащение, пронумеровать пробирку и направление. Пробирка и направление каждого пациента имеют одинаковый порядковый номер.
3. Помочь занять пациенту удобное положение, лёжа или сидя для венепункции. Зависит от тяжести состояния пациента.
4. Вымыть и осушить руки, надеть спецодежду, перчатки. Соблюдается безопасность мед. сестры на рабочем месте.
5. Подложить под локоть пациента клеёнчатый валик. Для максимального разгибания локтевого сустава.
6. Наложить резиновый жгут в области средней трети плеча и завязать так, чтобы петля жгута была направлена вниз, а свободные концы вверх (под жгут подложить салфетку или расправить рукав рубашки). Жгут не должен при завязывании ущемить кожу руки, а при венепункции его концы не должны попасть на обработанное спиртом поле.
7. Попросить пациента несколько раз сжать и разжать кулак. Найти наиболее наполненную вену. Лучше пунктировать наполненную фиксированную вену.
8. Обработать вену в области локтевого сгиба ватными шариками, смоченными 70% этиловым спиртом не менее двух раз, меняя их и соблюдая правила асептики. Обязательно соблюдать правила асептики.
Выполнение процедуры.
1. Выполнить венепункцию.
2. Убедиться, что игла в вене: потянуть поршень на себя. Возникает ощущение «попадания в пустоту». В шприце должна появиться кровь.
3. Продолжать тянуть поршень на себя, набирая нужное количество крови, не снимая жгута. Количество крови зависит от вида и количества анализов.
4. Развязать жгут, прежде чем извлечь иглу из вены. Это предотвратит образование гематомы в месте пункции.
5. Прижать место пункции стерильным ватным шариком (салфеткой), смоченным70% спиртом, извлечь иглу. Фиксировать шарик в течение 1-2 минут, затем сбросить в дезинфекционный контейнер Не оставляйте ватный шарик, загрязнённый кровью у пациента.
6. Попросить пациента согнуть руку в локтевом суставе, удерживая ватный шарик на месте пункции. Ватный шарик на месте пункции сдавливает вену и способствует остановке кровотечения после инъекции.
7. Снять иглу со шприца, сбросить в дезраствор. Это можно не делать, но необходимо знать, что эритроциты крови могут быть повреждены при выпуске крови из шприца через иглу и это вызовет их гемолиз.
8. Выпустить медленно кровь по стенке пробирки, находящейся в штативе. Следить, чтобы кровь не пенилась при быстром наполнении пробирки, так как это приведёт к гемолизу крови в пробирке.
9. Разобранный шприц положить в ёмкость для инъекции.
Окончание процедуры.
1. Помочь пациенту встать или лечь удобно. Зависит от тяжести состояния пациента.
2.Установить штатив в контейнер, затем в бикс. Подробный домашний адрес необходим для проведения заключительной дезинфекции в очаге.
3. Доставить бикс с кровью и направлением в иммунологическую лабораторию.

Техника постановки и учет кожно-аллергологической пробы

Цель: определение повышенной чувствительности макроорганизма к возбудителю и его токсинам, для диагностики бруцеллеза, туляремии, токсоплазмоза, брюшного тифа, орнитоза, дизентерии, Ку-лихорадки и др.

Оснащение: туберкулиновый шприц с иглой, 70% этиловый спирт, аллерген (бруцеллин, тулярин).



Источник: https://infopedia.su/3xd172.html

Доктор Дмитриев
Добавить комментарий